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細胞攻略 | Hepa1-6(小鼠肝癌細胞)培養教程

更新時間:2023-07-31瀏覽:884次



 

 

 

 細胞正常生長形態照片

 

細胞名稱:Hepa1-6(小鼠肝癌細胞)

細胞別稱:HEPA 1-6; Hepa-1-6; Hepa 1-6

細胞貨號:  SNL-118

生長特性:  貼壁

培養條件: DMEM+10%FBS+1mM Sodium Pyruvate+1% P/S

培養環境:  空氣,95%;二氧化碳 (CO2),5%

細胞簡介:  Hepa1-6細胞是C57/L小鼠肝癌細胞系Hepa-1的衍生系。Hepa1-6細胞細胞表達白蛋白、甲胎蛋白(AFP)、α1抗胰蛋白酶、淀粉酶基因,經檢測鼠痘病毒陰性。Hepa1-6細胞可以用于3D細胞培養和癌癥研究,也是一種合適的轉染宿主。

 

 

 


Hepa1-6細胞培養注意事項

 


01培養時細胞碎片可能會比較多

如果在密度較大時傳代,碎片數量也隨之增加。碎片較多時,通過PBS潤洗和換液清除碎片。


02細胞形態多變

這與細胞密度、實際培養條件和操作相關。Hepa1-6在低密度和高密度狀態下,形態有較大差異。低密度時細胞形態各異,呈多角形;高密度時細胞形態更均一,呈鋪路石狀。有少部分貼壁細胞呈發亮的球形,是正常現象。


●低密度 


高密度水印.jpg

●高密度 

03細胞貼壁較弱

Hepa1-6細胞貼壁弱,消化時間偏短,注意控制消化時間。操作步驟見下文。

 


Hepa1-6細胞傳代方法

 

1. 準備所需的培養基、胰酶、PBS、離心管、培養瓶以及無菌槍頭等;(試劑提前預熱)

2. 抽走培養瓶內培養基,加5mL PBS潤洗1-2遍,清除殘留培養基;

3. 盡量吸干潤洗的PBS后加1mL胰酶,搖晃使胰酶均勻覆蓋瓶底,放置培養箱37℃消化;

4. 消化時每隔1min拿出來觀察,鏡下可見細胞明顯回縮,輕拍培養瓶部分細胞開始脫落時立即加入3-4mL含血清的培養基終止消化,吹落貼壁的細胞;

Tips:注意控制吹打力度輕柔,吹打次數不可過多,避免機械損傷

5. 將細胞懸液轉移至離心管中,1000rpm,3min離心收集細胞;

6. 在新的培養瓶中加入適量新鮮培養基;(T25推薦10mL,T75推薦15mL)

7. 離心完成后,棄上清,加入適量新鮮培養基輕輕重懸吹散細胞,將細胞懸液均勻接種至培養瓶中,十字法或8字法混勻,然后放入培養箱中繼續培養,注意培養瓶蓋透氣;

Tips:推薦傳代比例1:2-1:4,*次傳代建議1:2。細胞生長至80%密度時即可傳代。

 

 


Hepa1-6細胞凍存方法

 

1. 配制程序性凍存液,準備相應數量凍存管并做好標記。

Tips:推薦凍存液配方92%FBS+8%DMSO或92%*全培養基+8%DMSO

2. 先將細胞按傳代步驟消化、離心、棄上清,獲得細胞沉淀;

3. 加入適量程序性凍存液輕輕重懸細胞,并將細胞懸液轉移至凍存管中;

4. 將凍存管放入程序性凍存盒,放入-80℃冰箱過夜;

5. 轉移凍存細胞至液氮保存并登記細胞保存位置

Tips:

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液氮保存24h后建議復蘇一管檢測凍存細胞的活性,若活性合格即可長期保存。

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程序性凍存液需要配合程序性凍存盒使用,若使用非程序凍存液請按產品說明書處理降溫過程。

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T25培養瓶長滿通常可凍存2-3管,10cm皿長滿通常可凍存3-4管。

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凍存密度低將導致復蘇后細胞狀態不佳。

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Hepa1-6細胞復蘇方法

 

1. 提前將水浴鍋預熱至37℃,培養基復溫至室溫或37℃,離心機設置好轉速;

2. 將細胞從液氮罐取中出,觀察管內無液氮的情況下,捏住管蓋,將細胞凍存部分浸入水浴鍋迅速搖晃,細胞融化至米粒大小冰塊時終止水浴,融化過程不超過2min;

Tips:

· 

若液氮或冰箱距離細胞房較遠,細胞需要放在干冰或冰盒上運送至細胞房。

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凍存管在液氮長期保存過程中難免滲入液氮,取出細胞時震動不要過大。水浴前一定要觀察管內是否存在液氮,若有液氮需靜置一會待液氮*全蒸發后再水浴。做好防護,避免凍存管炸開導致受傷。

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水浴時使用一次性PE手套包住凍存管避免直接接觸水源,避免污染。

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3. 直接將凍存管以離心力150g(約900rpm)左右離心2min,不同離心機具體轉速會有差異

4. 離心完成后棄上清,用預熱的培養基緩慢加入凍存管,輕柔重懸細胞后接種至培養瓶中,輕輕混勻后放入培養箱;

5. 復蘇24h后觀察并換液一次,放回培養箱繼續培養。

Tips:整個細胞復蘇過程在盡可能5-10min內完成。

 


Hepa1-6細胞收貨攻略

 


常溫細胞

1. 收貨后,拆開外包裝,用75%酒精消毒T25瓶表面,放37℃培養箱靜置4h以上;

2. 吸走大部分培養基并留10-12 mL,顯微鏡下拍照保存細胞狀態照片,觀察細胞密度,若細胞密度大于80%即可按比例傳代(*次傳代比例建議1:2),若細胞密度低于70%可以留10-12 mL繼續培養至細胞密度80%以上再進行傳代培養;

 


凍存細胞

1. 細胞收貨后盡快開箱檢查,若干冰充足可以取出細胞迅速置于-80℃冰箱(2-3天內復蘇)短期保存或液氮中長期保存,若干冰*全揮發建議立即復蘇細胞并聯系銷售人員解決;

2. 凍存細胞建議盡快復蘇一管培養檢查,以免超出售后期,復蘇步驟參考復蘇攻略;

3. 復蘇一管細胞出現異常及時聯系銷售人員,在專業技術支持的指導下進行下一步操作;

Tips:

1. 細胞收貨出現漏液、培養瓶破損、干冰*全揮發等異常情況時,及時拍照聯系銷售人員;

 

2. 尚恩生物T25瓶發貨的細胞內含對應細胞的*全培養基,可以收集原裝培養瓶內培養基經1500rpm離心5min后,取上清于4℃保存用于后續細胞培養;

 


 


常見問題及解決方案


細胞密度怎么計算的?

嚴格意義上,細胞密度需要收集細胞懸液計數細胞數量,但在實際培養過程中,并不需要為了精確控制細胞數量而消化細胞計數。因此,常用的細胞密度指細胞相對于最大生長密度的比值,貼壁細胞可以粗略的用細胞所占培養容器底面積百分比表示,即顯微鏡下觀察培養容器底部,有細胞的區域占總區域的百分比值,當然這種表達方式受限于單個細胞生長不同密度時所占面積不同導致并不嚴謹,但也是相當直觀、簡便的表現細胞狀態的一種方式。

 

NO.2培養過程中細胞碎片較多怎么處理?

1. 細胞內的黑色顆粒是細胞外分泌泡及細胞器折光,這個屬于細胞自身特性,無法清除也無法改變,大部分細胞都會有這種現象,只是不同細胞顆粒多少有區別,細胞培養體系不適應、營養缺乏、滲透壓異常等均可能導致細胞內顆粒增加,建議使用合適的培養條件。

2. 細胞外的黑色顆粒大部分是細胞碎片和細胞代謝產物,可以先吸走培養基后用PBS潤洗清除,再加新的培養基繼續培養。潤洗不能清除的可以換液清洗后等細胞密度70-80%左右消化處理細胞,消化完成后加*全培養基終止消化,混勻細胞,收集細胞懸液900-1000rpm(約150g)離心3min,棄上清。再加5mL PBS重懸細胞,再離心后,用*全培養基重懸接種到新的培養皿。第二次PBS重懸是為了去除碎片,如果平時碎片比較少,傳代時可以省略PBS重懸的步驟;如果碎片很多,建議PBS多洗幾次。

 

NO.3細胞具體消化時間是多久?

每個實驗室用的胰酶活力及消化步驟、試劑都是不一樣的,不能*全規定消化時間,以實際消化效果和實驗經驗為準。 


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